細胞侵襲實驗服務

使用說明書

僅供體外研究使用，不用于臨床診斷!

第1版（2016年04月修訂）

【服務內容】

侵襲實驗大部分是對腫瘤細胞侵襲能力的檢測，將待研究的細胞加入Transwell小室的上室，下室加入高濃度FBS培養液，下室的培養液影響上室的細胞，使細胞透過基質膠和聚碳酸酯膜，記錄細胞的穿過膜的個數，實驗過程中不同處理組的細胞透過膜的個數不同，其侵襲能力不同，本實驗的目的是檢測細胞的侵襲能力的強弱。

【項目和周期】

周期：1~2周

基本步驟：

（1）預冷：槍頭、EP 管、培養板、Transwell小室4℃預冷半小時。

（2）包被基底膜：Matrigel膠4℃過夜融化成液態后與無血清 DMEM培養基按1：9比例稀釋，每孔 40ul 稀釋膠均勻涂布于 Transwell小室濾膜的上表面，37℃、5％CO2細胞培養箱內孵育2小時。

（3）水化基底膜：每室加入50ul無血清的DMEM 培養基，于37℃、5％CO2細胞培養箱內孵育1小時，吸棄培養液。

（4）制備單細胞懸液：分別取轉染后培養 24 小時的細胞，0.25％胰酶消化并收集細胞，1000rpm 離心 5min，棄上清液，用無血清 DMEM 培養液重懸細胞，計數，調整細胞密度為 1×10e6 個／ml。

（5）接種細胞：將單細胞重懸液各取 200ul 加入上室，下室中加入600ul含 30％FBS 的 DMEM 培養液，每組細胞設3個復孔。種板時注意下層培養基和小室中的聚碳酸酯膜間不要有氣泡產生，于37℃、5％CO2 細胞培養箱內培養72小時。

（6）固定、染色：取出小室，小心吸去上室的培養液，PBS緩沖液輕洗 3次，用消毒濕棉簽輕輕擦凈上室未侵襲細胞及 Martrigel膠，95%酒精固定30min，結晶紫染色 10min，自來水沖洗3次以上，晾干。

（7）拍照、計數：20 倍光學顯微鏡下觀察，計數每視野的侵襲細胞數，計算平均值。實驗數據重復3次。

 

【客戶提供的材料】

 1.待檢測或處理的細胞；如果常見的人和大小鼠細胞系，公司可免費提供。

 2.細胞處理的相關藥物和實驗方案；

【反饋給客戶結果】

 1、提供相應實驗數據和圖表；

 2、提供具體的實驗報告；